采用农杆菌侵染无菌苗下胚轴，胚性愈伤诱导芽分化的方法实现棉花遗传转化。具有标准的棉花分化转化体系，出苗稳定，阳性率高。从侵染到出苗4-6个月左右。

是一种检测蛋白质和DNA序列相互结合的技术，可用于定性和定量分析。

双分子荧光互补（Bimolecular Fluorescent Complimentary, BiFC）技术是指通过具有相互作用亲和力的两个蛋白质，将分别与其相连的荧光蛋白片段拉近，组装成完整的荧光蛋白，从而表征蛋白质相互作用的发生及其空间位置。

DNA pull-down是体外研究DNA与蛋白互作的有力工具。

染色质免疫沉淀技术（ChIP）是一种在检测与特异性蛋白质结合的DNA片段，以探究特异性蛋白质与DNA相互作用的技术，通常用于研究转录因子与基因启动子结合位点或组蛋白特异性修饰位点。

GST pull-down是体外研究蛋白与蛋白互作的有力工具。该技术将GST标签融合表达的诱饵蛋白，特异性结合谷胱甘肽亲和凝胶或磁珠，而后与细胞裂解液共孵育，纯化出与GST融合表达的诱饵蛋白，通过洗涤、洗脱得到的蛋白产物，利用western-blot检测特定蛋白是否与猎物蛋白结合；或通过质谱鉴定筛选出与诱饵蛋白可能互作的蛋白信息。

Co-IP技术，是用于检测蛋白质相互作用的一种方法。该实验基于免疫学原理，利用与目标蛋白质特异性结合的抗体对其进行识别和富集。当目标蛋白质和其配体或互作伴侣结合在一起时，进一步通过洗涤、洗脱和分析等步骤，以便完全确定目标蛋白质和其互作伴侣的身份和相互作用模式。

Co-IP实验是一种常用的蛋白质分析方法，在生物医学和基础研究中具有广泛应用价值。该方法可以用于研究蛋白质相互作用及其互作位点、信号转导途径、细胞周期、疾病机制、病原及药物靶点等方面的问题。

      基于荧光素酶（luciferase）的发光原理，科学家发明了双荧光素酶报告基因检测系统。该系统包括萤火虫荧光素酶（Firefly luciferase）和海肾荧光素酶（Renilla luciferase）。两者可催化各自的底物发生氧化作用产生生物荧光，产生的荧光数值大小即表示了两种酶的表达量多少。其通常以萤火虫荧光素酶为报告基因，以海肾荧光素酶为内参基因。所构成的报告系统具有灵敏度高、动态范围广、应用灵活等优势，广泛应用于基因调控、非编码RNA靶向互作、信号转导、转录因子转录活性、SNP活性分析等研究领域。

亚细胞定位的目的是查找生物大分子在细胞内的具体存在的位置，融合了GFP的目的蛋白在扫描共聚焦显微镜的激光照射下，会发出绿色荧光，结合不同细胞器的marker来精确地定位。

植物细胞壁染色的原理‌主要基于细胞壁的化学成分和染色剂的选择性结合。植物细胞壁由纤维素、半纤维素和果胶质等组成，这些成分可以通过特定的染色剂进行染色。例如，纤维素可以通过氯化锌-碘液染成蓝紫色，果胶质可以被钉红染成红色。可以对植物根，棉花纤维等进行染色。